Лечение антибиотиками может усугубить биопленку
ДомДом > Новости > Лечение антибиотиками может усугубить биопленку

Лечение антибиотиками может усугубить биопленку

Jul 22, 2023

npj Биопленки и микробиомы, том 9, Номер статьи: 26 (2023) Цитировать эту статью

889 Доступов

13 Альтметрика

Подробности о метриках

Обман кворума, социо-микробиологический процесс, основанный на мутациях в системах определения плотности клеток (чувство кворума), стал важным фактором, способствующим инфекции, связанной с биопленками, у ведущего человеческого патогена Staphylococcus aureus. Это связано с тем, что инактивация стафилококковой системы кворум-сенсинга Agr приводит к выраженному образованию биопленок, повышению устойчивости к антибиотикам и механизмам иммунной защиты. Поскольку инфекции биопленки в клинике обычно прогрессируют при лечении антибиотиками, мы исследовали, способствует ли такое лечение инфекции биопленки посредством пропаганды мошенничества кворума. Развитие Quorum Cheer стимулировалось несколькими антибиотиками, используемыми при лечении стафилококковых биопленочных инфекций, в большей степени в биопленочном, чем в планктонном способе роста. Субингибирующие концентрации левофлоксацина и ванкомицина исследовали на предмет их воздействия на инфекцию, связанную с биопленкой (подкожная катетер-ассоциированная инфекция и инфекция, связанная с протезными суставами), где, в отличие от модели подкожной инфекции кожи, не связанной с биопленкой, наблюдалось значительное увеличение наблюдалась бактериальная нагрузка и развитие agr-мутантов. Наши результаты напрямую демонстрируют развитие дисфункции Agr в моделях инфекций, связанных с биопленками животных, и показывают, что неподходящее лечение антибиотиками может быть контрпродуктивным для таких инфекций, поскольку оно способствует нарушению кворума и связанному с этим развитию биопленок.

Внутрибольничные инфекции (ВГА) поражают в среднем 7,6% госпитализированных пациентов в странах с высоким уровнем дохода1. В Соединенных Штатах смертность от ИСМП оценивается примерно в 99 000 смертей в год2 и остается значительной, несмотря на некоторое недавнее снижение3. В странах с низким уровнем дохода заболеваемость и смертность от ИСМП еще выше1,4. Многие ИСМП возникают в результате инфекций постоянных медицинских устройств, таких как хирургические имплантаты, протезы и катетеры мочевыводящих путей, внутривенные или центральные катетеры5. Зачастую смертельный исход инфекций, связанных с устройством, в основном обусловлен инфекциями кровотока, источником которых являются зараженные устройства6,7. Например, инфекции кровотока, ассоциированные с центральной линией (CLABSI), один из наиболее смертоносных типов ИСМП, имеют уровень смертности 12–25%8. Инфекции, связанные с устройствами, как известно, трудно лечить из-за образования биопленок. Биопленки представляют собой бактериальные скопления, которые могут покрывать внутреннюю и внешнюю поверхность устройства и проявлять выраженную устойчивость к антибиотикам9,10,11,12. По этой причине инфекции, связанные с использованием устройств, по-прежнему трудно поддаются лечению даже с помощью современных стратегий разработки лекарств13.

Одной из наиболее частых причин инфекций, связанных с устройствами, является Staphylococcus aureus14. По сравнению с другими бактериями, часто встречающимися при этих инфекциях, такими как близкородственные коагулазонегативные стафилококки, инфекции S. aureus, связанные с устройствами, обычно демонстрируют более тяжелое клиническое прогрессирование и исход из-за более выраженной вирулентности S. aureus14,15. 16. S. aureus печально известен своей исключительной устойчивостью к лечению антибиотиками17, что отчасти связано со специфическими генами устойчивости к антибиотикам, такими как mecA у метициллин-резистентного S. aureus (MRSA)17,18. Однако даже антибиотики, которые обычно эффективно убивают MRSA, такие как ванкомицин, значительно снижают активность против MRSA в биопленках19,20, а биопленки, образованные метициллин-чувствительным S. aureus (MSSA), также демонстрируют выраженную устойчивость к лечению антибиотиками21,22. Таким образом, понимание механизмов устойчивости к антибиотикам при инфекции биопленок имеет важное значение для совершенствования стратегии лечения этого основного внутрибольничного патогена.

За последние десятилетия проводились интенсивные исследования молекулярных основ образования биопленок. У S. aureus и других патогенов, образующих биопленки, это привело к идентификации широкого спектра молекул, которые структурно, метаболически или регуляторно участвуют в формировании биопленок23,24. Например, системы кворума (QS), которые адаптируют физиологию бактерий к изменяющимся условиям, вызванным увеличением плотности клеток, играют ключевую роль в развитии биопленок у многих бактерий25,26. У S. aureus имеется одна система QS, которая называется Agr (регулятор дополнительного гена)27,28. Agr контролирует несколько факторов, которые способствуют развитию биопленок, в том числе протеазы и нуклеазы, которые разрушают матрикс биопленки, и фенолрастворимые модулины (PSM), которые представляют собой амфипатические пептиды, которые структурируют биопленки, предотвращая нековалентные взаимодействия между макромолекулами матрикса23,29,30. Отсутствие PSMs приводит к уменьшению образования каналов биопленки и в целом к ​​более толстым и компактным биопленкам, в такой же выраженной степени, как это наблюдается у мутантов agr, что указывает на ключевую роль PSMs в развитии биопленок31. Мы также подтвердили роль Agr и PSM в S. aureus и S. epidermidis на моделях инфекций, связанных с биопленками25,31,32,33,34. Однако это довольно редкие примеры, когда модели инфекции биопленок использовались для подтверждения достоверности результатов in vitro25. В целом динамика заражения биопленками остается не до конца изученной.

 10%; Van > 2% of the entire population) (Fig. 3d, e). The mouse biofilm-associated infection models can barely be further extended because the infections heal. Nevertheless, these data indicate that QS mutants can develop and substantially proliferate during antibiotic treatment of biofilm-associated infection. Because the biofilm phenotypes we observed with low-dose antibiotics can theoretically also be due to reduced Agr expression under those conditions, we analyzed whether low-dose antibiotic treatment leads to changes in agr expression. While it is difficult to estimate the actual in vivo concentrations at the biofilm infection site, we used the 5× MIC concentrations we had employed in the in vitro experiment shown in Fig. 1c for that purpose. We believe that the moderate growth inhibition observed with those concentrations in vitro indicates that they are at least as high as those encountered in vivo because we did not observe growth inhibition in vivo with the used antibiotic concentrations at the initial 1-day time points. There was no inhibition of agr expression, as measured by qRT-PCR of the agrA gene, by 5× MIC of Lev, Van, or Cli (Supplementary Fig. 2). For all three antibiotics, agr expression, in fact, rather increased./p>